Клиника Анастасия — Прайс

Клиника Анастасия — Прайс

Список услуг

ООО «Клиника пластической хирургии и косметологии «Анастасия»

Прейскурант от 03.01.2021 г.

ПЛАСТИЧЕСКАЯ ХИРУРГИЯ

ООО «Центр эстетической медицины «Анастасия»

Прейскурант от 03.01.2021 г.

КОСМЕТОЛОГИЯ

КОСМЕТОЛОГИЯ (хирургическая)

СТОМАТОЛОГИЯ

КОНСУЛЬТАЦИИ

⠀

Указанные на сайте цены не являются публичной офертой. Стоимость услуг устанавливается и оплачивается согласно Прейскурантам Клиники и Центра, действующим на момент оказания услуги.

список процедур
запись на прием
подарочный сертификат

Клиника Анастасия — Лазерные технологии

Клиника Анастасия — Лазерные технологии

Клиника пластической хирургии и косметологии «Анастасия» — лидер в эстетической медицине Нижнего Новгорода.

Список услуг

Удаление новообразований кожи

С каждым днем увеличивается число пациентов, которые желают удалить доброкачественные новообразования кожи. Практически каждый человек имеет на теле родинки (невусы) врожденного или приобретенного характера.

Подробнее

Краевая резекция вросшего ногтя

Подробнее

Лазерная эпиляция

Лазерная эпиляция – это современная лечебно-косметическая методика, результатом применения которой является долговременный устойчивый эффект абсолютно гладкой и полностью лишенной волос кожи. Эффект является результатом удаления стержня волоса вместе с его корнем и достигается постепенным разрушением волосяных фолликулов направленным воздействием лазерного излучения.

Подробнее

Лазерное омоложение

Клиника «Анастасия» рада предложить вам процедуру лазерного омоложения, которую наши специалисты проведут с помощью инновационной лазерной системы MAGIC 3.

Подробнее

Лазерное лечение угревой болезни

Подробнее

Косметический лазер MAGIC 3

Подробнее

Лазеры применяются в медицине уже несколько десятилетий. В настоящее время они приобретают все большую популярность.

Преимущества применения лазеров в косметологии и хирургии очевидны:

• современные лазеры позволяют хирургу полностью контролировать свои действия;
• сокращается время проведения операции и реабилитационный период;
• лазерные лучи малотравматичны, при проведении процедуры они одновременно запаивают сосуды;
• лазерный луч обеспечивает бесконтактное воздействие, что исключает возможность занесения инфекции

Клиника «Анастасия» является первопроходцем лазерной медицины в Нижнем Новгороде. За 23 года работы лазерного отделения были разработаны десятки  уникальных методик по удалению сосудистых новообразований кожи, сосудистых образований, татуировок, лечению вросшего ногтя, поверхностных и глубоких лазерных шлифовок.

Предметом особой гордости является совместная разработка специалистов клиники и учёных кафедры квантовой физики ННГУ – трехдиапазонная лазерная система MAGIC3, которая с успехом применяется не только в ведущих косметологических центрах России, но и в Соединенных Штатах Америки.

На данный момент лазерное отделение обладает мощнейшим арсеналом современного оборудования:

1.  Трехдиапазонная лазерная система Magic 3 — используется для лазерного омоложения, удаления сосудистых образований, удаления татуировок, лечения акне.
2. Углекислотный лазер (C02)  — используется для удаления новообразований (бородавок, папиллом, невусов, кератом), лазерной шлифовки , удаления вросшего ногтя.
3. Er-Yag лазер Fotona с дополнительной фракционной насадкой — используется для шлифовки рубцов, лазерного омоложения.
4. Диодный лазер (сосудистый)- используется для удаления сосудистых новообразований.
5. Радиочастотный хирургический аппарат WaveTronic
6. Электрохирургический генератор с аргонусиленной коагуляцией ValleyLab

В клинике «Анастасия» используются все основные методы удаления новообразований кожи (родинок, папиллом, бородавок и др.).

Но самым современным, эффективным и популярным является удаление новообразований при помощи СО2- лазера.

Лазерное удаление применяется в 80% случаев. Его преимущества очевидны: бесконтактность, высокая точность воздействия, минимальное повреждение здоровых тканей, бескровность, что в купе приводит к уменьшению сроков заживления и оптимальному конечному косметическому результату. 

Практически все удаления новообразований кожи безболезненны, так как проводятся под местной анестезией.
Сроки заживления в среднем составляют 1-2 недели, но могут составлять и до 30 дней в зависимости от патологии. 

Также при помощи СО2-лазера проводится краевая резекция вросшего ногтя.
Основное преимущество данного метода состоит в том, что резекция краевой части ногтя не требует полного удаления пластины, а это значительно снижает реабилитационный период.
Срок заживления после операции вросшего ногтя — до 30 дней. После коррекции происходит полное восстановление пораженной части. Благодаря лазерной технологии удается сохранить основную часть ногтя, провести полную санацию поврежденного участка и предотвратить рецидивы (частота рецидивов после данного метода составляет не более 5%). 

Несмотря на высокую эффективность данного метода, в определённых случаях необходимо только хирургическое иссечение или более целесообразно применение других методов воздействий. 

В отделении работают высоко квалифицированные специалисты, обладающие сертификатами по лазерной хирургии, дерматоскопии, онкодерматологии.

При обращении в клинику ВСЕ новообразования кожи осматриваются дерматоскопом (прибор, увеличивающий в 10 раз). 

специалисты

Михайлов Александр Геннадьевич Пластический хирург, хирург, кандидат медицинских наук
действительный член РОПРЭХ
Член ISAPS Овчинников Евгений Владимирович Сертификат  «Хирургия»
Спец.курс по лазерной хирургии
Повышение квалификации ФГУ «Спец.курс по лазерной медицине»
Тятюшина Ольга Александровна Врач-хирург Тишкова Галина Николаевна Пластический хирург, хирург, действительный член РОПРЭХ Беллюстина Елена Николаевна Пластический хирург, хирург, действительный член РОПРЭХ, член ISAPS Копытов Владимир Александрович Стаж работы более 30 лет.
Владеет всеми методиками проведения герниопластики передней брюшной стенки.
Проводит удаление различных новообразований кожи как хирургическим способом, так и при помощи лазерных технологий.
Колесник Олеся Станиславовна
Врач-косметолог
Гаврикова Татьяна Викторовна Зав. отделением косметологии
Врач-косметолог Колесникова Елена Павловна Врач-косметолог Донец Юлия Владимировна Врач-трихолог
Врач-косметолог

все специалисты

список процедур
запись на прием
подарочный сертификат

Устойчивость к противомикробным препаратам и сравнительный геномный анализ Elizabethkingia anophelis subsp. endophytica, выделенная из сырого молока

1. Kämpfer P., Matthews H., Glaeser S.P., Martin K., Lodders N., Faye I. Elizabethkingia Anophelis Sp. Nov., выделен из средней кишки комара Anopheles Gambiae. Междунар. Дж. Сист. Эвол. микробиол. 2011;61:2670–2675. doi: 10.1099/ijs.0.026393-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Breurec S., Criscuolo A., Diancourt L., Rendueles O., Vandenbogaert M., Passet V., Caro V., Rocha E.P.C., Touchon M., Brisse S. Геномная эпидемиология и глобальное разнообразие нового бактериального патогена Elizabethkingia Anophelis. науч. 2016;6:30379. doi: 10.1038/srep30379. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Janda J.M., Lopez D.L. Мини-обзор: Новые профили патогенов: Elizabethkingia Anophelis. Диагн. микробиол. Заразить. Дис. 2017; 88: 201–205. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2017.03.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Frank T., Gody J.C., Nguyen L.B.L., Berthet N., Le Fleche-Mateos A., Bata P., Rafaï C., Kazanji M., Breurec S. Первый случай менингита Elizabethkingia Anophelis в Центральноафриканской Республике. Ланцет. 2013; 381:1876. дои: 10.1016/S0140-6736(13)60318-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Тео Дж. Первый случай вспышки E. Anophelis в отделении интенсивной терапии. Ланцет. 2013; 382: 855–856. doi: 10.1016/S0140-6736(13)61858-9. [CrossRef] [Google Scholar]. Бактериемия Elizabethkingia Anophelis связана с клинически значимыми инфекциями и высокой смертностью. науч. Отчет 2016; 6: 26045. doi: 10.1038/srep26045. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Мур Л.С.П., Оуэнс Д.С., Джепсон А., Тертон Дж.Ф., Эшворт С., Дональдсон Х., Холмс А.Х. Элизабеткингия менингосептика, передающаяся через воду, в реанимации взрослых — Том 22, номер 1 — Январь 2016 г. — Журнал новых инфекционных заболеваний — Центры по контролю и профилактике заболеваний США . Эмердж. Заразить. Дис. 2016;22:9–17. doi: 10.3201/eid2201.150139. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Lee Y.L., Liu K.M., Chang HL, Lin J.S., Kung F.Y., Ho C.M., Lin KH, Chen Y.T. Доминантный штамм Elizabethkingia Anophelis появился из системы водоснабжения больницы, вызвав трехлетнюю вспышку в респираторном центре. Дж. Хосп. Заразить. 2021; 108: 43–51. doi: 10.1016/j.jhin.2020.10.025. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

9. Perrin A., Larsonneur E., Nicholson A.C., Edwards D.J., Gundlach K.M., Whitney A.M., Gulvik C.A., Bell M.E., Rendueles O., Cury J., et al. Эволюционная динамика и геномные особенности штамма Elizabethkingia Anophelis с 2015 по 2016 год, вызванного вспышкой в ​​Висконсине. Нац. коммун. 2017;8:15483. doi: 10.1038/ncomms15483. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

датский мужчина. Отчет по делу JMM 2018; 5:e005163. дои: 10.1099/jmmcr.0.005163. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Auffret N., Anghel R., Brisse S., Rey B., Schenesse D., Moquet O. Elizabethkingia Anophelis Meningitis у путешественника, возвращающегося из Северная и Южная Америка. Мед. Мал. Заразить. 2020; 51: 503–505. doi: 10.1016/j.medmal.2020.10.023. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Гонсалес Л.Дж., Вила А.Дж. Резистентность к карбапенемам у Elizabethkingia Meningoseptica опосредована металло-β-лактамазой BlaB. Антимикроб. Агенты Чемотер. 2012; 56:1686–1692. doi: 10.1128/AAC.05835-11. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Россолини Г.М., Франческини Н., Лауретти Л., Каравелли Б., Риччио М.Л., Галлени М., Фрер Ж.М., Амикосанте Г. Клонирование Хромосомный ген Chryseobacterium (Flavobacterium) Meningosepticum (BlaA(CME)), кодирующий β-лактамазу класса расширенного спектра, относящуюся к Bacteroides Cephalosporinases и β-лактамазам VEB-1 и PER. Антимикроб. Агенты Чемотер. 1999;43:2193–2199. дои: 10.1128/AAC.43.9.2193. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Bellais S., Aubert D., Naas T., Nordmann P. Молекулярная и биохимическая гетерогенность карбапенем-гидролизующих β-лактамаз класса B в Chryseobacterium Meningosepticum . Антимикроб. Агенты Чемотер. 2000; 44: 1878–1886. doi: 10.1128/AAC.44.7.1878-1886.2000. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Chew K.L., Cheng B., Lin R.T.P., Teo J.W.P. Elizabethkingia Anophelis является доминирующим видом Elizabethkingia, обнаруженным в культурах крови в Сингапуре. Дж. Клин. микробиол. 2018;56:e01445-17. doi: 10.1128/JCM.01445-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Хан М.С., Ким Х., Ли Ю., Ким М., Ку Н.С., Чой Дж.Ю., Йонг Д., Чон С.Х., Ли К., Чонг Ю. Относительная распространенность и чувствительность к противомикробным препаратам клинических изолятов видов Elizabethkingia Основано на секвенировании гена 16S рРНК. Дж. Клин. микробиол. 2017;55:274–280. doi: 10.1128/JCM.01637-16. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Lin J.N., Lai CH, Yang CH, Huang YH, Lin H.H. Клинические проявления, молекулярные характеристики, модели антимикробной чувствительности и вклад мутации гена-мишени во фторхинолон Сопротивление в Элизабеткингии Анофелис. Дж. Антимикроб. Чемотер. 2018;73:2497–2502. doi: 10.1093/jac/dky197. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Doijad S., Ghosh H., Glaeser S., Kämpfer P., Chakraborty T. Таксономическая переоценка рода Elizabethkingia с использованием полногеномного секвенирования: Elizabethkingia Endophytica Kämpfer et al. . 2015 — более поздний субъективный синоним Elizabethkingia Anophelis Kämpfer et Al. 2011. Междунар. Дж. Сист. Эвол. микробиол. 2016;66:4555–4559. doi: 10.1099/ijsem.0.001390. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Kämpfer P., Busse HJ, McInroy J.A., Glaeser S.P. Elizabethkingia Endophytica Sp. Nov., Выделено из Zea Mays и изменено описание Elizabethkingia Anophelis Kämpfer et Al. 2011. Междунар. Дж. Сист. Эвол. микробиол. 2015;65:2187–2193. doi: 10.1099/ijs.0.000236. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Guillon H., Eb F., Mammeri H. Характеристика CSP-1, новой β-лактамазы расширенного спектра действия, продуцируемой клиническим изолятом Capnocytophaga Sputigena. Антимикроб. Агенты Чемотер. 2010;54:2231–2234. doi: 10.1128/AAC.00791-09. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Li S., Chen Q., Gong X., Liu Y., Zheng F. RanB. Резистентность к аминогликозидам и толерантность к органическим растворителям у Riemerella Anatipesifer. Вет. микробиол. 2020;243:108641. doi: 10.1016/j.vetmic.2020.108641. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

22. Чианчотто Н.П., Филдс Б.С. Ген Mip Legionella Pneumophila усиливает внутриклеточную инфекцию простейших и макрофагов человека. проц. Натл. акад. науч. США. 1992; 89: 5188–5191. doi: 10.1073/pnas.89.11.5188. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Reimer A., ​​Seufert F., Weiwad M., Ebert J., Bzdyl N.M., Kahler C.M., Sarkar-Tyson M., Holzgrabe U. , Рудель Т., Козьяк-Павлович В. Ингибиторы инфекционности макрофагов. Междунар. Дж. Антимикроб. Агенты. 2016; 48: 401–408. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2016.06.020. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

24. Лян В. Г., Манкл Дж. М., Чжао М., Тан В. Дж. Структурный анализ Mycobacterium Tuberculosis M13 Metalloprotease Zmp1 Open States. Структура. 2021;29:709–720.e3. doi: 10.1016/j.str.2020.12.002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Бернард Д., Гор Л., Хендерсон А., Ранасингхе А., Берг Х., Коттрелл К., Сарович Д.С., Прайс Э.П., Патерсон Д.Л., Харрис П.Н.А. Сравнительная геномика и профилирование устойчивости к противомикробным препаратам изолятов Элизабеткингии выявили нозокомиальную передачу и чувствительность in vitro к фторхинолонам, тетрациклинам и триметоприму-сульфаметоксазолу. Дж. Клин. микробиол. 2020;58:e00730-20. doi: 10.1128/JCM.00730-20. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Wang M., Gao H., Lin N., Zhang Y., Huang N., Walker E.D., Ming D., Chen S., Hu S. Резистентность к антибиотикам и патогенность мультирезистентной Elizabethkingia Anophelis Изолировать. Микробиологияоткрыть. 2019;8:e804. doi: 10.1002/mbo3.804. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Баия А.К., Донг Ю., Блумберг Б.Дж., Мламбо Г., Трипати А., Бенмарзук-Идальго О.Дж., Чандра Р., Димопулос Г. Исследование Бактерии кишечника Anopheles для блокирования активности плазмодия. Окружающая среда. микробиол. 2014;16:2980–2994. doi: 10.1111/1462-2920.12381. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Terenius O., Lindh J.M., Eriksson-Gonzales K., Bussière L., Laugen AT, Bergquist H., Titanji K., Faye I. Бактериальная динамика средней кишки у Aedes Aegypti. ФЭМС микробиол. Экол. 2012; 80: 556–565. doi: 10.1111/j.1574-6941.2012.01317.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Чен С., Багдасарян М., Уокер Э.Д. Elizabethkingia Anophelis: молекулярные манипуляции и взаимодействия с хозяевами комаров. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2015;81:2233–2243. doi: 10.1128/AEM.03733-14. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Джонсон В.Л., Рамачандран А., Торрес Н.Дж., Николсон А.С., Уитни А.М., Белл М., Вилларма А., Хамригхаус Б.В., Шет М., Дауд С.Е. и др. Черновые геномы Elizabethkingia Anophelis лошадиного происхождения генетически сходны с тремя изолятами из клинических образцов человека. ПЛОС ОДИН. 2018;13:e0200731. doi: 10.1371/journal.pone.0200731. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Bruehl G.W. Почвенные патогены растений. Паб Макмиллан. Ко; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: Collier Macmillan; Лондон, Великобритания: 1987. 368p [Google Scholar]

32. Болезни человека, передающиеся через почву — Бюро публикаций ЕС. [(по состоянию на 9 февраля 2022 г.)]. Доступно на сайте: https://op.europa. eu/en/publication-detail/-/publication/ee3d1682-0ea4-483d-9a3d-92e83812b6c9/language-en

33. Адгамов Р.Р., Тимченко Н.Ф., Зайцева Е.А., Пушкарева В.И., Колбасов Д.В., Егорова И.Ю., Пуховская Н.М., Мусатов Ю.С., Иванов Л.И., Ермолаева С.А. Эколого-генетические механизмы развития эпидемиологически значимых штаммов возбудителей сапронозов. биол. Бык. 2013;3:125–138. дои: 10.1134/S2079086413020023. [CrossRef] [Google Scholar]

34. Пушкарева В.И., Ермолаева С.А. Фактор вирулентности Listeria Monocytogenes Листериолизин О способствует росту бактерий в совместной культуре с инфузориями Tetrahymena Pyriformis, вызывает инцистирование простейших внутри цисты и способствует выживанию бактерий. БМС микробиол. 2010;10:26. дои: 10.1186/1471-2180-10-26. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Matz C., Kjelleberg S. С крючка — как бактерии выживают при выпасе простейших. Тенденции микробиол. 2005; 13: 302–307. doi: 10.1016/j.tim.2005.05.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Ким Х., Чо Дж.Х., Сонг М., Чо Дж.Х., Ким С., Ким Э.С., Кеум Г.Б., Ким Х.Б., Ли Дж.Х. Оценка распространенности патогенов пищевого происхождения в животноводстве с использованием подхода метагеномики. Дж. Микробиол. Биотехнолог. 2021; 31: 1701–1708. doi: 10.4014/jmb.2109.09038. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Франко-Фриас Э., Меркадо-Гуахардо В., Мерино-Маскорро А., Перес-Гарса Х., Эредиа Н., Леон Дж.С., Джейкус Л.А., Давила- Авинья Дж., Гарсия С. Анализ бактериальных сообществ с помощью секвенирования гена 16S рРНК в агросреде, выращивающей дыни. микроб. Экол. 2021; 82: 613–622. doi: 10.1007/s00248-021-01709-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Rasch J., Krüger S., Fontvieille D., Ünal C.M., Michel R., Labrosse A., Steinert M. Взаимодействие легионелл, простейших и нематод в водных биопленках и Влияние Mip на колонизацию Caenorhabditis Elegans. Междунар. Дж. Мед. микробиол. 2016; 306: 443–451. doi: 10.1016/j.ijmm.2016.05.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Trifi A., Abdellatif S., Abdennebi C., Daly F., Nasri R., Touil Y., Ben Lakhal S. Целесообразность эмпирической антимикробной терапии имипенемом/ Колистин у пациентов с тяжелым сепсисом: обсервационное когортное исследование. Анна. клин. микробиол. Антимикроб. 2018;17:39. doi: 10.1186/s12941-018-0292-7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Smith CJ, Owen C., Kirby L. Активация загадочного гена устойчивости к стрептомицину в Bacteroides Erm Transposon, Tn4551. Мол. микробиол. 1992; 6: 2287–2297. doi: 10.1111/j.1365-2958.1992.tb01404.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Coyne S., Rosenfeld N., Lambert T., Courvalin P., Périchon B. Сверхэкспрессия резистентности-узлообразования-клеточного деления Насос AdeFGH обеспечивает множественную лекарственную устойчивость в Acinetobacter Baumannii . Антимикроб. Агенты Чемотер. 2010;54:4389–4393. doi: 10.1128/AAC.00155-10. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Warburton P.J., Ciric L., Lerner A., ​​Seville L.A., Roberts A.P., Mullany P., Allan E. TetAB(46), a Predicted Гетеродимерный ABC-транспортер, обеспечивающий устойчивость к тетрациклину у Streptococcus Australis, выделенного из ротовой полости. Дж. Антимикроб. Чемотер. 2013;68:17–22. doi: 10.1093/jac/dks351. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Teo J.W.P., Tan T.M.C., Poh C.L. Генетические детерминанты устойчивости к тетрациклину у Vibrio Harveyi. Антимикроб. Агенты Чемотер. 2002;46:1038–1045. doi: 10.1128/AAC.46.4.1038-1045.2002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Lin J.N., Lai CH, Yang CH, Huang YH, Lin H.H. Геномные особенности, филогенетические отношения и сравнительная геномика штамма Elizabethkingia Anophelis EM361-97 в Тайване. науч. Отчет 2017;7:14317. дои: 10.1038/s41598-017-14841-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Chiu C.T., Lai C.H., Huang Y.H., Yang C.H., Lin J. N. Сравнительный анализ градиентной диффузии и дисковой диффузии с разбавлением агара для тестирования чувствительности Elizabethkingia Anophelis. Антибиотики. 2021;10:450. doi: 10.3390/антибиотики10040450. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Weisburg W.G., Barns S.M., Pelletier D.A., Lane D.J. Амплификация 16S рибосомной ДНК для филогенетического исследования. Дж. Бактериол. 1991;173:697–703. doi: 10.1128/jb.173.2.697-703.1991. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Оконечников К., Голосова О., Фурсов М., Варламов А., Васькин Ю., Ефремов И., Герман Грехов О.Г., Кандров Д. , Распутин К., Сябро М. и др. Юнипро ЮГЕНЭ: Единый инструментарий биоинформатики. Биоинформатика. 2012;28:1166–1167. doi: 10.1093/биоинформатика/bts091. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Юн С.Х., Ха С.М., Квон С., Лим Дж., Ким Ю., Сео Х., Чун Дж. Представляем EzBioCloud: таксономически объединенная база данных гена 16S рРНК Последовательности и полногеномные сборки. Междунар. Дж. Сист. Эвол. микробиол. 2017;67:1613–1617. дои: 10.1099/ijsem.0.001755. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Bolger A.M., Lohse M., Usadel B. Trimmomatic: гибкий триммер для данных последовательностей Illumina. Биоинформатика. 2014;30:2114–2120. doi: 10.1093/биоинформатика/btu170. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Davis J.J., Wattam A.R., Aziz R.K., Brettin T., Butler R., Butler R.M., Chlenski P., Conrad N., Dickerman A. , Дитрих Э.М. и др. Ресурсный центр биоинформатики PATRIC: расширение возможностей данных и анализа. Нуклеиновые Кислоты Res. 2020;48:D606–D612. дои: 10.1093/нар/гкз943. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Азиз Р.К., Бартельс Д., Бест А., ДеДжонг М., Диз Т., Эдвардс Р.А., Формсма К., Гердес С., Гласс Э.М., Кубал М. и др. Сервер RAST: быстрые аннотации с использованием технологии подсистем. БМС Геном. 2008; 9:75. дои: 10.1186/1471-2164-9-75. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Overbeek R., Olson R., Push G.D., Olsen G.J., Davis J.J., Disz T., Edwards R.A., Gerdes S., Parrello B. , Шукла М. и др. SEED и быстрая аннотация микробных геномов с использованием технологии подсистем (RAST) Nucleic Acids Res. 2014;42:D206–D214. дои: 10.1093/нар/гкт1226. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Бреттин Т., Дэвис Дж.Дж., Диз Т., Эдвардс Р.А., Гердес С., Олсен Г.Дж., Олсон Р., Овербик Р., Паррелло Б. ., Пуш Г.Д. и соавт. RASTtk: модульная и расширяемая реализация алгоритма RAST для создания пользовательских конвейеров аннотаций и аннотирования пакетов геномов. науч. 2015; 5:8365. doi: 10.1038/srep08365. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Бертельс Ф., Силандер О.К., Пачков М., Рейни П.Б., Ван Нимвеген Э. Автоматическая реконструкция полногеномных филогений на основе чтения коротких последовательностей. Мол. биол. Эвол. 2014;31:1077–1088. дои: 10.1093/молбев/msu088. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Lee I., Kim Y.O., Park SC, Chun J. OrthoANI: улучшенный алгоритм и программное обеспечение для расчета средней идентичности нуклеотидов. Междунар. Дж. Сист. Эвол. микробиол. 2016;66:1100–1103. doi: 10.1099/ijsem.0.000760. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Chen C., Chen H., Zhang Y., Thomas H.R., Frank M.H., He Y., Xia R. TBtools: комплексный инструментарий, разработанный для интерактивного анализа больших Биологические данные. Мол. Завод. 2020;13:1194–1202. doi: 10.1016/j.molp.2020.06.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Мейер-Колтхофф Дж. П., Карбасе Дж. С., Пейнадо-Оларте Р. Л., Гёкер М. TYGS и LPSN: Тандем базы данных для быстрой и надежной классификации и номенклатуры прокариот на основе генома. Нуклеиновые Кислоты Res. 2022; 50:D801–D807. doi: 10.1093/nar/gkab902. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Xu L., Dong Z., Fang L., Luo Y., Wei Z., Guo H., Zhang G., Gu Y.Q., Коулман-Дерр Д., Ся К. и др. OrthoVenn2: веб-сервер для сравнения всего генома и аннотации ортологичных кластеров нескольких видов. Нуклеиновые Кислоты Res. 2019;47:W52–W58. doi: 10.1093/nar/gkz333. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Liu B., Zheng D., Jin Q., Chen L., Yang J. VFDB 2019: Сравнительная патогеномная платформа с интерактивным веб-интерфейсом . Нуклеиновые Кислоты Res. 2019;47:D687–D692. doi: 10.1093/nar/gky1080. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Alcock B.P., Raphenya A.R., Lau T.T.Y., Tsang K.K., Bouchard M., Edalatmand A., Huynh W., Nguyen A.L.V., Cheng A.A., Liu С. и др. CARD 2020: Наблюдение за резистентностью к антибиотикам с помощью комплексной базы данных об устойчивости к антибиотикам. Нуклеиновые Кислоты Res. 2020;48:D517–D525. дои: 10.1093/нар/гкз935. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Ларкин М.А., Блэкшилдс Г., Браун Н.П., Ченна Р., Макгеттиган П.А., Маквильям Х., Валентин Ф., Уоллес И.М., Вилм А. , Лопес Р. и др. Clustal W и Clustal X версии 2.0. Биоинформатика. 2007; 23: 2947–2948. doi: 10.1093/биоинформатика/btm404. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Arndt D., Grant J.R., Marcu A., Sajed T., Pon A., Liang Y., Wishart D.S. PHASTER: улучшенная и более быстрая версия PHAST Phage Инструмент поиска. Нуклеиновые Кислоты Res. 2016;44:W16–W21. дои: 10.1093/нар/gkw387. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Couvin D., Bernheim A., Toffano-Nioche C., Touchon M., Michalik J., Néron B., Rocha E.P.C., Vergnaud G. ., Gautheret D., Pourcel C. CRISPRCasFinder, обновление CRISRFinder, включает портативную версию, улучшенную производительность и интегрированный поиск белков Cas. Нуклеиновые Кислоты Res. 2018;46:W246–W251. doi: 10.1093/nar/gky425. [Бесплатная статья ЧВК] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

россиян придумали альтернативное использование конфискованных продуктов питания

В четверг вступил в силу противоречивый президентский указ, предписывающий уничтожать любые подпадающие под эмбарго западные продукты питания, обнаруженные как контрабандные ввозимые в страну, и творческие идеи российских чиновников о том, как избавиться от этих продуктов питания, были встречены встречными предложениями со стороны общественных деятелей.

Противники указа обратились к общей памяти страны, где нехватка продуктов питания, особенно качественных, неизвестна. Но их призывы пожертвовать конфискованные продукты питания нуждающимся, по-видимому, остаются без внимания.

Постановление правительства, опубликованное 31 июля, не определяет метод уничтожения конфискованных западных продуктов питания, а говорит только, что это должно быть сделано любым доступным методом, который не представляет опасности для окружающей среды, но официальные лица заявили, что, скорее всего, это будет сожжено. .

Официальный представитель Россельхознадзора Юлия Мелано сообщила агентству ТАСС в понедельник, что мясные и молочные продукты будут сжигаться из-за биологической опасности.

В понедельник новостной сайт «Фонтанка» сообщил, что Минсельхоз закупает для этих целей мобильные крематории у петербургской компании «Турмалин» по цене 6 миллионов рублей (100 тысяч долларов) за каждый крематорий.

Меры распространяются на импорт продуктов питания из западных стран, которые Россия запретила в августе прошлого года в ответ на западные санкции, введенные против России в связи с ее участием в украинском кризисе.

В санкционный список в настоящее время входят говядина, свинина, птица, рыба, фрукты, овощи, молочные продукты и орехи, произведенные в США, ЕС, Канаде, Австралии и Норвегии.

Первоначально запрет был введен на год, но после того, как западные страны недавно расширили санкции против России, мера была продлена до августа 2016 года9.0003

Killing 2 Birds

Постановление правительства требует, чтобы уничтожение продуктов питания снималось на видео, что вызвало горькие шутки в российских социальных сетях о том, что это может быть новым применением для тысяч камер наблюдения, которые использовались для наблюдения за голосованием на избирательных участках с момента Президентские выборы 2012 года — практика, отменённая несколько недель назад.

Еще один способ борьбы с западным мясом и молочными продуктами — переработка его в белковую муку и скармливание ее скоту, заявил в понедельник сайту «Российской службы новостей» заместитель главы Россельхознадзора Алексей Алексеенко.

Фрукты и овощи нужно снести бульдозерами, сказал он.

Ранее обнаруженные на границе запрещенные товары отправлялись обратно в страны их происхождения. Идея уничтожения конфискованных продуктов питания была выдвинута министром сельского хозяйства Александром Ткачевым и поддержана президентом Владимиром Путиным в указе от 29 июля. этого года, добавив, что она проверила только одну десятую продуктов, ввезенных в Россию за этот период.

Вице-премьер Аркадий Дворкович сообщил на днях, что с августа прошлого года зарегистрировано от 700 до 800 правонарушений, связанных с контрабандой продовольственных товаров.

Помощь нуждающимся

Между тем, число россиян, живущих за чертой бедности, увеличилось почти до 23 миллионов человек в первом квартале этого года и составляет 15,9 процента от общей численности населения, по данным Росстата. .

Российские общественные деятели и простые граждане, обеспокоенные уничтожением продуктов питания, пригодных к употреблению, предложили свои варианты использования запрещенных продуктов.

Федерация еврейских общин России предложила раздать беднякам запрещенные продукты.

«Еврейская община России считает, что раздача санкционной еды детским домам и благотворительным организациям, помогающим бездомным и малоимущим, будет достойной и гуманной альтернативой сжиганию запрещенных продуктов», — заявил глава федерации Александр Борода. Воскресенье.

Лидер Коммунистической партии России Геннадий Зюганов предложил пожертвовать запрещенные продукты детским домам, православным общинам и охваченному войной Донбассу на востоке Украины, сообщило в воскресенье РИА Новости.

«Я бы создал комиссию, которая приняла бы, а затем отправила [санкционированные продукты] нашим друзьям в Донецкой и Луганской [самопровозглашенных народных] республиках», — цитирует Зюганова телеканал «Россия-24». .

Уничтожение разрешенных продуктов питания — крайняя мера, заявил лидер партии.

Максим Сурайкин, лидер партии «Коммунисты России», не связанной с организацией Зюганова, предложил отправлять в Африку запрещенные западные товары, сообщила во вторник газета «Известия».